검사방법의 선택 임균감염증

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  • 배양검사는 특이적이며 저렴한 검사방법이며, 항균제감수성 검사를 할 수 있다.
  • 항균제를 포함한 선택적인 배양배지가 요구된다. 임균은 생활력이 약하기 때문에 배양검사의 민감도를 높이기 위해서는 검체의 적합한 채취, 운반 그리고 분리과정이 필요하다.[1](근거수준 3)
B   임균의 배양검사를 위해서는 선택배지와 함께 검체의 적합한 채취, 운반 그리고 분리과정이 요구된다.
  • 감염 48시간 이내에 수집된 검체의 배양검사 결과는 음성일 수 있다.
  • 배양검사는 아동 성학대(직장, 인두, 질), 성폭행, 치료 실패, 골반내감염의 진단, 항생제 내성 지역이나 해외에서의 감염을 진단할 때 유용하다.
  • 균이 동정된다면 항생제 감수성 검사가 필요하며, 치료 추적 검사 배양 양성 시와 치료 실패 시에도 필요하다.
  • 임균의 생활력을 유지할 수 없을 정도로 검체의 운반과 저장이 용이하지 않다면 비배양검사가 바람직하다. 특히 골반 검사나 요도 면봉검사를 꺼려하는 환자들에게서 첫소변 검체를 이용한 핵산증폭검사가 유용할 수 있다.[2]
  • 핵산증폭검사는 일반적으로 배양검사에 비해 민감도(≥90%)가 더 높다.[3][4]
  • 핵산증폭검사는 상업적으로 제품화된 자동 또는 반자동 장치로 소개되어 있으며, 그 검사방식은 다음과 같다.
- Polymerase chain reaction (PCR)
- Real-time polymerase chain reaction (Real-time PCR)
- Ligase chain reaction (LCR)
- Standard displacement amplification (SDA)
- Transcription mediated amplification (TMA)
- Nucleic acid sequence based amplification (NASBA)
  • N. gonorrhoeae에 대한 핵산증폭검사는 다른 Neisseria 종에 대한 교차반응 때문에 위양성이 나올 수 있다. 따라서 임질에 대한 핵산증폭검사를 시행할 때는 두 개의 다른 시동체(primer)를 사용하거나 2개의 다른 핵산증폭검사를 이용하여 확진하여야 한다.[5][6][7](근거수준 3)
D   핵산증폭검사는 생식기 임균감염의 비배양검사로 권장된다.
  • 상업적으로 제품화된 핵산증폭검사는 인두, 결막, 직장 검체에 대해 승인 받지 못하였다.[8][9](근거수준 2)
B   인두, 눈, 직장검체에 대해서는 핵산증폭검사가 권장되지 않는다.
  • 대부분의 핵산증폭검사는 클라미디아와 임균을 동시에 하나의 검체로 진단할 수 있다. 한 연구에 따르면 클라미디아 단독 검사와 클라미디아와 임균 동시검사는 동일한 정확도를 보였다.[10] (근거수준 2)
B   핵산증폭검사는 클라미디아 단독 또는 임균과의 동시검사로 이용될 수 있다.
  • 그람염색 또는 메틸렌블루염색을 통한 현미경검사는 요도 분비물의 증상을 가진 남성에서는 높은 민감도(≥95%)를 가진 신속검사이다.[11] 하지만 무증상 남성, 자궁경부내막 감염, 직장 감염에서는 낮은 민감도(≤40-55%)를 가지므로 권장되지 않는다.[11][12]
  1. ↑ Jephcott AE. Microbiological diagnosis of gonorrhoea. Genitourin Med 1997;73:245-252.
  2. ↑ Johnson RE, Newhall WJ, Papp JR, et al. Screening tests to detect Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae infections — 2002. MMWR Recomm Rep 2002;51(RR-15):1–38.
  3. ↑ Cook RL, Hutchison SL, Østergaard L, et al. Systematic Review: Non-invasive testing for Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae. Ann Intern Med 2005; 142:914-925.
  4. ↑ Van Dyck E, Ieven M, Pattyn S, et al. Detection of Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae by enzyme immunoassay, culture and three nucleic acid amplification tests. J Clin Microbiol 2001;39:1751-1756.
  5. ↑ Ison C. GC NAATs: is the time right? Sex Transm Infect 2006;82:515.
  6. ↑ HPS, Scottish Bacterial STIs Reference Laboratory. Guidance on the Introduction of molecular testing for Neisseria gonorrhoeae in Diagnostic Laboratories. 01 Aug 2007.
  7. ↑ Smith DW, Tapsall JW, Lum G. Guidelines for the use and interpretation of nucleic acid detection tests for Neisseria gonorrhoeae in Australia: A position paper on behalf of the Public Health Laboratory Network. Communicable Diseases Intelligence 2005;29: 358-365.
  8. ↑ Page-Shafer K, Graves A, Kent C, et al. Increased sensitivity of DNA amplification testing for the detection of pharyngeal gonrrhoea in men who have sex with men. Clinical Infectious Diseases 2002;34:173-176.
  9. ↑ McNally LP, Templeton DJ, Jin F, et al. Low positive predictive value of a nucleic acid amplification test for nongenital Neisseria gonorrhoeae infection in homosexual men. Clin Infect Dis 2008 Jul 15;47(2):e25-e27.
  10. ↑ Gaydos CA, Quinn TC, Willis D, et al. Performance of the APTIMA Combo 2 assay for detection of Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae in female urine and endocervical swab specimens. J Clin Microbiol 2003;41:304-309.
  11. ↑ 11.0 11.1 Sherrard J, Barlow D. Gonorrhoea in men: clinical and diagnostic aspects. Genitourin Med 1996;72:422426.
  12. ↑ Barlow D, Phillips I. Gonorrhoea in women: diagnostic, clinical and laboratory aspects. Lancet 1978;i:761-764.
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